之前我们略述了代谢组学的课题设计，按照设计的思路进行实验后，就需要进行代谢样本的收集了。今天咱按照不同类型的样本，给大家提供一点收集的建议。
一、针对细胞类型样本，可分为四类如下：
1、贴壁细胞
2、悬浮细胞
3、微生物
4、 胞外代谢产物
四类细胞样本处理方法如下：
1、贴壁细胞
去除培养基，采用预冷的 PBS 清洗 2 - 3 次，离心弃去上清，加入 1ml 60% 冷甲醇，把培养容器中的所有细胞都刮取干净，收集在 1.5ml 离心管中，液氮速冻后 -80°C 保存。
2、悬浮细胞
离心收集悬浮细胞，用预冷的 PBS 清洗 2 - 3 次，离心弃上清，收集细胞于 1.5ml 离心管中，液氮速冻后 -80°C 保存。
3、微生物
取生长对数后期的或者稳定期中段的微生物，低温离心（4°C, 12000rpm, 10min），沉淀微生物，去掉上清液，放入液氮中或 -80°C 保存。
4、胞外代谢产物
培养基上清收集后液氮淬灭，冻干处理后 -80℃保存。
二、针对植物样本可按部位分为根、茎叶、果实及培养液等，其样本处理方法如下：
1、根
取植物的根部 50mg 以上，用 PBS 漂洗掉根上的泥土后用吸水纸吸掉多余水分，装入离心管，立即用液氮速冻处理 15min，于 -80°C 下保存。
2、茎、叶、花等
参照实验设计取特定组织部位 50mg 以上。用锡箔纸包裹并标记后，立即用液氮速冻处理 15min，于 -80°C 下保存。
3、果实
将同组的植株种子混匀后分装 50mg 以上至冻存管中，立即用液氮速冻处理 15min，于 -80°C 下保存。（如果果实外壳较硬，需要用粉碎机打碎过筛。）
4、植物培养液
直接低温离心（4°C, 12000rpm, 10min），取上清液，移至 1.5mL 离心管，200μL 分装后，于 -80°C 下保存。
三、针对临床和动物类型样本，其样本处理方法如下：
主要可分为体液（血清、血浆、尿液、泪液、脑脊液等）和组织类型（肝脏、肿瘤、肌肉、粪便等）等，处理方法如下：
1、血清
血液收集在不含抗凝剂的离心管中 4°C（或冰浴）静置 1h 进行凝固分层，低温离心（4°C, 12000rpm, 10min），取上清转移至干净的离心管中。取上清分装到 1.5mL 离心管中，每管 0.2mL，于 -80°C 下保存。
2、血浆
使用肝素钠抗凝管采集全血，轻轻摇晃采血管（避免红细胞破裂）使抗凝剂和血液充分混合，低温离心（4°C, 12000rpm, 10min），取上清液分装到 1.5mL 离心管中，每管 0.2mL，于 -80°C 下保存。
3、尿液
取称取中段尿到离心管中，低温离心（4°C, 12000rpm, 10min），吸取澄清尿液分装到 1.5mL 离心管中，每管 0.2mL，于 -80°C 下保存。
5、组织（肝脏、肿瘤、肌肉等）
根据实验设计取特定组织部位，如果组织上有血液残留，用生理盐水将其漂洗掉，按照 100 mg/ 样本装入冻存管中；后立即用液氮速冻处理 15min，于 -80°C 下保存。
以上是主要常见的几种样本类型采集方式啦，不过生物样本类型多样，童鞋们有其他类型的样本不确定如何收集可与我们直接沟通~
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